GPR159 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper

Sicherheitsdatenblatt

Hauptmerkmale und Details

Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen GPR159

Ziel: GPR159
Quelle/Host: Kaninchen
Reaktivität: Mensch, Maus, Ratte, Hund
Klonalität: Polyklonal
Anwendungen: WB, IF/ICC
Konjugation: Unkonjugiert
Lagerung: bei -20°C

Marke:

KAT.-NR. : APA08159

US$ Bitte wählen

Größe:

50μL 100 μL

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Produktdetails

Hintergrund

Atypischer Chemokinrezeptor, der die Chemokinspiegel und -lokalisation über eine hochaffine Chemokinbindung steuert, die von klassischen ligandengesteuerten Signaltransduktionskaskaden abgekoppelt ist und stattdessen zur Sequestrierung, zum Abbau oder zur Transzytose von Chemokinen führt. Auch bekannt als Interceptor (internalisierender Rezeptor) oder Chemokin-/Scavenging-Rezeptor oder Chemokin-Decoy-Rezeptor. Wirkt als Rezeptor für die Chemokine CXCL11 und CXCL12/SDF1 oder den Chemokin-Scavenging-Rezeptor oder den Chemokin-Decoy-Rezeptor. Wirkt als Rezeptor für die Chemokine CXCL11 und CXCL12/SDF1. Die Chemokinbindung aktiviert nicht die G-Protein-vermittelte Signaltransduktion, sondern induziert stattdessen die Beta-Arrestin-Rekrutierung, was zur Ligand-Internalisierung und Aktivierung des MAPK-Signalwegs führt.

Bewerbung

Um eine optimale Testleistung sicherzustellen, empfiehlt AREX die Durchführung einer auf jedes Testsystem zugeschnittenen Reagenzientitration, um optimale Nachweisergebnisse zu erzielen.

WB	1:500 - 1:1000
IF/ICC	1:50 - 1:200

*Ergebnisse sind probenspezifisch. Bitte beziehen Sie sich als Referenz auf Ihre lokalen Testbedingungen und Testparameter.

Übersicht

Beschreibung	Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen GPR159
Spezifität	Erkennt endogene Mengen an GPR159-Protein.
Antikörpertyp	Primärer Antikörper
Immunogen	KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region des menschlichen GPR159 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt.
Reinigung	Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt.
Molekulargewicht	Voraussichtlich: 41 kD; Beobachtet: 41; 52 kD
Form/Puffer	Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid.
Alternative Namen	CMKOR1; CXCR7; GPR159; RDC1; Atypischer Chemokinrezeptor 3; C-X-C-Chemokinrezeptor Typ 7; CXC-R7; CXCR-7; Chemokin-Orphan-Rezeptor 1; G-protein-gekoppelter Rezeptor 159; G-protein-gekoppelter Rezeptor RDC1-Homolog; RDC-1
Gensymbol	CXCR7
Entrez Gene	57007 (Mensch); 12778(Maus); 84348(Ratte)
SwissProt	P25106 (Mensch); P56485(Maus); O89039(Ratte)

*AREX optimiert unsere Produkte kontinuierlich. Der Inhalt der Webseite spiegelt möglicherweise nicht die neuesten Aktualisierungen wider. Für Anfragen wenden Sie sich bitte an info@arexbio.com oder Ihren lokalen Händler.
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Daten

Western-Blot-Analyse der GPR159-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), K562 (B), BV2 (C), MCF7 (D) und PC12 (E). (Vorhergesagte Bandengröße: 41 kD; beobachtete Bandengröße: 41; 52 kD)

Immunhistochemische Analyse der GPR159-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der GPR159-Färbung in COS7-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.

Lagerung

Kurzfristig bei 4°C lagern. Bei längerer Lagerung bei -20 °C lagern und Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.

Hinweis

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren geeignet.

FAQs

Was sind die wichtigsten Arten von Forschungsantikörpern und wie unterscheiden sie sich?

Forschungsantikörper werden hauptsächlich in monoklonale Antikörper und polyklonale Antikörper unterteilt. Monoklonale Antikörper bieten in der Regel eine höhere Spezifität und eine bessere Chargenkonsistenz, während polyklonale Antikörper oft eine stärkere Affinität bieten, aber möglicherweise größere Unterschiede zwischen den Chargen aufweisen. Die Wahl hängt von Ihren spezifischen experimentellen Anforderungen ab.

Wie kann ich feststellen, ob ein Forschungsantikörper für mein Experiment geeignet ist?

Es wird empfohlen, das Produktdatenblatt sorgfältig auf validierte Anwendungen, Speziesreaktivität, empfohlene Verdünnungen und veröffentlichte Referenzen zu prüfen. Bei neuen Antikörpern ist in der Regel die Durchführung einer Validierung im kleinen Maßstab mit positiven Kontrollproben hilfreich.

Kann eine unsachgemäße Lagerung von Forschungsantikörpern die Versuchsergebnisse beeinflussen?

Ja. Antikörper reagieren empfindlich auf Temperatur, wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen und Kontamination. Eine unsachgemäße Lagerung kann zu verminderter Aktivität, erhöhtem Hintergrund oder schwächeren Signalen führen. Befolgen Sie am besten die Lagerungshinweise im Produktdatenblatt.

Warum funktioniert die im Datenblatt empfohlene Verdünnung in meinem Experiment nicht?

Die empfohlene Verdünnung richtet sich nach den Testbedingungen des Lieferanten. Faktoren wie Probentyp, Fixierungsmethode und Nachweissystem in Ihrem Labor können die optimale Arbeitskonzentration beeinflussen. Oft ist es notwendig, eine Verdünnungsreihenoptimierung im eigenen System durchzuführen.

Welche Vorsichtsmaßnahmen sollte ich treffen, wenn ich einen neu erworbenen Forschungsantikörper zum ersten Mal verwende?

Es empfiehlt sich, den Antikörper (insbesondere konzentrierte oder lyophilisierte) kurz zu zentrifugieren und anschließend einen kleinen Pilotversuch unter den empfohlenen Bedingungen durchzuführen. Auch die Aufzeichnung der Chargennummer und des Verwendungsdatums ist für die zukünftige Nachverfolgung hilfreich.

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