GalNAc-T2 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen GalNAc-T2 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an GalNAc-T2-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Fusionsprotein von menschlichem GalNAc-T2 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 30; Beobachtet: 65 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Polypeptid N-Acetylgalactosaminyltransferase 2; Polypeptid GalNAc-Transferase 2; GalNAc-T2; pp-GaNTase 2; Protein-UDP Acetylgalactosaminyltransferase 2; UDP-GalNAc:Polypeptid N-Acetylgalactosaminyltransferase 2 |
Gensymbol | GALNT2 |
Entrez Gene | 2590 (Mensch); 108148(Maus) |
SwissProt | Q10471 (Mensch); Q6PB93 (Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der GalNAc-T2-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), A431 (B), Mauslunge (C), Rattenniere (D) und Rattenhirn (E). (Vorhergesagte Bandengröße: 30; 64 kD; beobachtete Bandengröße: 65 kD)

Immunhistochemische Analyse der GalNAc-T2-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des Gehirns von Ratten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der GalNAc-T2-Färbung in Hela-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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