GAB1 (Phospho-Y627) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen GAB1 (Phospho-Y627) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an GAB1-Protein nur, wenn es an Y627 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten entspricht, die Y627 des menschlichen GAB1-Proteins umgeben. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 76 kD; Beobachtet: 110 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | GRB2-assoziiertes-bindendes Protein 1; GRB2-zugehöriger Ordner 1; Wachstumsfaktor-Rezeptor-gebundenes Protein 2-assoziiertes Protein 1 |
Gensymbol | GAB1 |
Entrez Gene | 2549 (Mensch); 14388(Maus) |
SwissProt | Q13480 (Mensch); Q9QYY0(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der GAB1 (Phospho-Y627)-Expression in Ganzzelllysaten von Hela (A), U2OS (B), Mauslunge (C), Maushoden (D) und Rattenlunge (E). (Vorhergesagte Bandengröße: 76 kD; beobachtete Bandengröße: 110 kD)

Immunhistochemische Analyse der GAB1-Färbung (Phospho-Y627) in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt der menschlichen Prostata. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der GAB1-Färbung (Phospho-Y627) in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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