ERAP1 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen ERAP1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an ERAP1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem ERAP1 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 107 kD; Beobachtet: 107 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ANWENDUNGEN; KUNST1; KIAA0525; Endoplasmatische Retikulum-Aminopeptidase 1; KUNST-1; Adipozyten-abgeleitete Leucin-Aminopeptidase; A-LAP; Aminopeptidase PILS; Puromycin - unempfindliche Leucyl - spezifische Aminopeptidase; PILS-AP; Typ-1-Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor-Shedding-Aminopeptidase-Regulator |
Gensymbol | ERAP1 |
Entrez Gene | 51752 (Mensch); 80898(Maus); 80897(Ratte) |
SwissProt | Q9NZ08 (Mensch); Q9EQH2(Maus); Q9JJ22(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der ERAP1-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), HEK293T (B), PC12 (C) und AML12 (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 107 kD; beobachtete Bandengröße: 107 kD)

Immunhistochemische Analyse der ERAP1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der ERAP1-Färbung in NIH3T3-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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