Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Ephrin A5
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
FC | 1:100 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Ephrin A5 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Ephrin A5-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem Ephrin A5 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 26 kD; Beobachtet: 21 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | EPLG7; LERK7; Ephrin-A5; AL-1; EPH-verwandter Rezeptor-Tyrosinkinase-Ligand 7; LERK-7 |
Gensymbol | EFNA5 |
Entrez Gene | 1946 (Mensch); 13640(Maus); 116683(Ratte) |
SwissProt | P52803 (Mensch); O08543(Maus); P97605(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Ephrin-A5-Expression in Ganzzelllysaten von Mäuseherzen (A), Rattenherzen (B) und Rattennieren (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 26 kD; beobachtete Bandengröße: 21 kD)

Immunhistochemische Analyse der Ephrin-A5-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von Brustkrebs beim Menschen. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Ephrin A5-Färbung in Hela-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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