Polyklonaler Kaninchen-Antikörper EPHB1/2/3
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen EPHB1/2/3 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an EPHB1/2/3-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem EPHB1/2/3 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Vorhergesagt: 109; Beobachtet: 130 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | EPHB1; ELCH; EPHT2; HEK6; NETTO; Ephrin-Typ-B-Rezeptor 1; ELCH; EPH-Tyrosinkinase 2; EPH-ähnliche Kinase 6; EK6; hEK6; Neuronal exprimierte EPH-verwandte Tyrosinkinase; NETTO; Tyrosin-Proteinkinase-Rezeptor EPH-2; EPHB2; DRT; EPHT3; EPTH3; ERK; HEK5; TYRO5; Ephrin-Typ-B-Rezeptor 2; Entwicklungsregulierte Eph-verwandte Tyrosinkinase; ELK-verwandte Tyrosinkinase; EPH-Tyrosinkinase 3; EPH-ähnliche Kinase 5; EK5; hEK5; Nierenkarzinom-Antigen NY-REN-47; Tyrosin-Proteinkinase TYRO5; Tyrosin-Proteinkinase-Rezeptor EPH-3; EPHB3; ETK2; HEK2; TYRO6; Ephrin-Typ-B-Rezeptor 3; EPH-ähnliche Tyrosinkinase 2; EPH-ähnliche Kinase 2; Embryonale Kinase 2; EK2; hEK2; Tyrosin-Proteinkinase TYRO6 |
Gensymbol | EPHB1; EPHB2; EPHB3 |
Entrez Gene | 2047; 2048; 2049 (Mensch); 270190; 13845(Maus) |
SwissProt | P54762; P29323; P54753 (Mensch); Q8CBF3; P54763; P54754(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der EPHB1/2/3-Expression in Ganzzelllysaten von A549 (A), HEK293T (B), Mäusegehirn (C) und Rattenherz (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 109; 117; 110 kD; beobachtete Bandengröße: 130 kD)

Immunhistochemische Analyse der EPHB1/2/3-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der EPHB1/2/3-Färbung in NIH3T3-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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