Polyklonaler Kaninchen-Antikörper EIF3L
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen EIF3L |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an EIF3L-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-term-Region von menschlichem EIF3L umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 66 kD; Beobachtet: 67 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | EIF3EIP; EIF3S6IP; Eukaryontischer Translationsinitiationsfaktor 3 Untereinheit L; eIF3l; Eukaryontischer Translationsinitiationsfaktor 3 Untereinheit 6-interagierendes Protein; Eukaryotischer Translationsinitiationsfaktor 3 Untereinheit E-interagierendes Protein |
Gensymbol | EIF3L |
Entrez Gene | 51386 (Mensch); 223691(Maus) |
SwissProt | Q9Y262 (Mensch); Q8QZY1(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der EIF3L-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), Hela (B), HGC27 (C), Mäuseniere (D), Rattenniere (E) und Rattenhoden (F). (Vorhergesagte Bandengröße: 66 kD; beobachtete Bandengröße: 67 kD)

Immunhistochemische Analyse der EIF3L-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt der menschlichen Bauchspeicheldrüse. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der EIF3L-Färbung in HEK293-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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