DYNLL1 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen DYNLL1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an DYNLL1-Protein |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid des menschlichen DYNLL1. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 10 kD; Beobachtet: 11 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | DLC1; DNCL1; DNCLC1; HDLC1; Zytoplasmatische Dynein-Leichtkette 1; 8 kDa leichte Dyneinkette; DLC8; Leichte Dyneinkette LC8-Typ 1; Proteininhibitor der neuronalen Stickoxidsynthase; PIN |
Gensymbol | DYNLL1 |
Entrez Gene | 8655 (Mensch); 56455(Maus); 58945(Ratte) |
SwissProt | P63167 (Mensch); P63168(Maus); P63170(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der DYNLL1-Expression in Ganzzelllysaten von A549 (A), NIH3T3 (B) und Rattenrückenmark (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 10 kD; beobachtete Bandengröße: 11 kD)

Immunhistochemische Analyse der DYNLL1-Färbung im formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt von Ratteneierstöcken. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der DYNLL1-Färbung in C6-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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