DUSP19 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen DUSP19 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an DUSP19-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem DUSP19 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 24 kD; Beobachtet: 24 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | DUSP17; LMWDSP3; SKRP1; Proteinphosphatase 19 mit doppelter Spezifität; Dual-Spezifitäts-Phosphatase TS-DSP1; Niedrigmolekulare Phosphatase mit doppelter Spezifität 3; LMW-DSP3; Proteinphosphatase SKRP1; Stress-aktivierter Proteinkinaseweg-regulierende Phosphatase 1; SAPK-Weg-reguliert Phosphatase 1 |
Gensymbol | DUSP19 |
Entrez Gene | 142679 (Mensch) |
SwissProt | Q8WTR2 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der DUSP19-Expression in Panc1 (A)-Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 24 kD; beobachtete Bandengröße: 24 kD)

Immunhistochemische Analyse der DUSP19-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Nierenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der DUSP19-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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