Polyklonaler Kaninchen-Antikörper DLC1
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen DLC1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an DLC1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-term-Region von menschlichem DLC1 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 170 kD; Beobachtet: 170 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ARHGAP7; KIAA1723; STARD12; Rho-GTPase-aktivierendes Protein 7; Bei Leberkrebs 1 Protein gelöscht; DLC-1; HP-Protein; Rho-Typ GTPase-aktivierendes Protein 7; START-Domäne-enthält Protein 12; StARD12; StAR-verwandtes Lipidtransferprotein 12 |
Gensymbol | DLC1 |
Entrez Gene | 10395 (Mensch); 50768(Maus) |
SwissProt | Q96QB1 (Mensch); Q9R0Z9(Maus); Q63744(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der DLC1-Expression in Ganzzelllysaten von C6 (A), CT26 (B), LOVO (C) und HEK293T (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 170 kD; beobachtete Bandengröße: 170 kD)

Immunhistochemische Analyse der DLC1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Prostatakrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der DLC1-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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