Polyklonaler Kaninchen-Antikörper DDB1
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen DDB1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an DDB1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid von menschlichem DDB1 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 50; Beobachtet: 127 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | XAP1; DNA-Schaden-bindendes Protein 1; DDB p127-Untereinheit; DNA-Schaden-bindendes Protein a; DDBa; Schädigung-spezifisches DNA-Bindungsprotein 1; HBV X-assoziiertes Protein 1; XAP-1; UV-geschädigte DNA-Bindungsfaktor; UV-geschädigte DNA-bindendes Protein 1; UV-DDB 1; XPE-Bindungsfaktor; XPE-BF; Xeroderma pigmentosum Gruppe E-komplementierendes Protein; XPCe |
Gensymbol | DDB1 |
Entrez Gene | 1642 (Mensch); 13194(Maus) |
SwissProt | Q16531 (Mensch); Q3U1J4(Maus); Q9ESW0(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der DDB1-Expression in Ganzzelllysaten von A549 (A), Mäusehirn (B), Mäusemilz (C) und Mäuseleber (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 50; 126 kD; beobachtete Bandengröße: 127 kD)

Immunhistochemische Analyse der DDB1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten menschlichen Nierengewebeabschnitten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der DDB1-Färbung in NIH3T3-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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