Cytokeratin 18 (Phospho-S33) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Cytokeratin 18 (Phospho-S33) |
Spezifität | Erkennt endogene Konzentrationen des Proteins Cytokeratin 18 nur, wenn es an S33 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S33 des menschlichen Cytokeratin-18-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 48 kD; Beobachtet: 55 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CYK18; Keratin, Zytoskelett Typ I 18; Zellproliferation - induzierendes Gen-46-Protein; Zytokeratin-18; CK-18; Keratin-18; K18 |
Gensymbol | KRT18 |
Entrez Gene | 3875 (Mensch); 16668(Maus); 294853(Ratte) |
SwissProt | P05783 (Mensch); P05784(Maus); Q5BJY9(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Expression von Cytokeratin 18 (Phospho-S33) in Ganzzelllysaten von HCT116 (A), LO2 (B), MCF7 (C), A549 (D), SGC7901 (E), CT26 (F), C6 (G). (Vorhergesagte Bandengröße: 48 kD; beobachtete Bandengröße: 55 kD)

Immunhistochemische Analyse der Cytokeratin 18 (Phospho-S33)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Dickdarmkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Cytokeratin 18 (Phospho-S33)-Färbung in A431-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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