Polyklonaler Cyclophilin-F-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Cyclophilin F |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Cyclophilin-F-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem Cyclophilin F umfasst. Die genaue Sequenz ist geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 22 kD; Beobachtet: 22 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CYP3; Peptidyl-Prolyl cis-trans Isomerase F mitochondrial; PPIase F; Cyclophilin D; CyP-D; CypD; Cyclophilin F; Mitochondriales Cyclophilin; CyP-M; Rotamase F |
Gensymbol | PPIF |
Entrez Gene | 10105 (Mensch); 105675(Maus); 282819(Ratte) |
SwissProt | P30405 (Mensch); Q99KR7(Maus); P29117(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Cyclophilin-F-Expression in Ganzzelllysaten von A549 (A), PC12 (B), Mäuseleber (C), Mäuseherz (D), Rattenleber (E) und Rattenherz (F). (Vorhergesagte Bandengröße: 22 kD; beobachtete Bandengröße: 22 kD)

Immunhistochemische Analyse der Cyclophilin-F-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Cyclophilin-F-Färbung in K562-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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