Polyklonaler Cyclophilin-D-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Cyclophilin D |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Cyclophilin-D-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Fusionsprotein des menschlichen Cyclophilin D |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 40 kD; Beobachtet: 41 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CYP40; CYPD; Peptidyl-Prolyl-cis-trans-Isomerase D; PPIase D; 40 kDa Peptidyl-Prolyl-cis-trans-Isomerase; Cyclophilin-40; CYP-40; Cyclophilin-verwandtes Protein; Rotamase D |
Gensymbol | PPID |
Entrez Gene | 5481 (Mensch); 67738(Maus); 361967(Ratte) |
SwissProt | Q08752 (Mensch); Q9CR16(Maus); Q6DGG0(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Cyclophilin-D-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), NIH3T3 (B) und Mausgehirn (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 40 kD; beobachtete Bandengröße: 41 kD)

Immunhistochemische Analyse der Cyclophilin-D-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des Gehirns von Ratten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Cyclophilin-D-Färbung in U2OS-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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