cTnI-Kaninchen-Polyklonaler Antikörper
Sicherheitsdatenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen cTnI |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an cTnI-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem cTnI umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 24 kD; Beobachtet: 28 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | TNNC1; Troponin I, Herzmuskel; Herztroponin I |
Gensymbol | TNNI3 |
Entrez Gene | 7137 (Mensch); 21954(Maus); 29248(Ratte) |
SwissProt | P19429 (Mensch); P48787(Maus); P23693(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der cTnI-Expression in Ganzzelllysaten von Mäuseherzen (A) und Rattenherzen (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 24 kD; beobachtete Bandengröße: 28 kD)
Immunhistochemische Analyse der cTnI-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Herzens. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der cTnI-Färbung in A431-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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