CDC25 (Phospho-S916) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CDC25 (Phospho-S916) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CDC25-Protein nur, wenn es an S916 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S916 des menschlichen CDC25-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 145 kD; Beobachtet: 155 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | RASGRF1; CDC25; GNRP; GRF1; Ras-spezifisches Guaninnukleotid-Releasing-Faktor 1; Ras-GRF1; Guaninnukleotid-freisetzendes Protein; GNRP; Ras-spezifischer Nukleotidaustauschfaktor CDC25 |
Gensymbol | RASGRF1 |
Entrez Gene | 5923 (Mensch); 19417(Maus) |
SwissProt | Q13972 (Mensch); P27671(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CDC25 (Phospho-S916)-Expression in Ganzzelllysaten von U87MG (A), Panc1 (B) und A549 (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 145 kD; beobachtete Bandengröße: 155 kD)

Immunhistochemische Analyse der CDC25 (Phospho-S916)-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CDC25 (Phospho-S916)-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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