Polyklonaler CD40-Kaninchen-Antikörper
Sicherheitsdatenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD40 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD40-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem CD40 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 30 kD; Beobachtet: 42 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | TNFRSF5; Mitglied der Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor-Superfamilie 5; B-Zelloberflächenantigen CD40; Bp50; CD40L-Rezeptor; CDw40; CD40 |
Gensymbol | CD40 |
Entrez Gene | 958 (Mensch); 21939(Maus) |
SwissProt | P25942 (Mensch); P27512(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der CD40-Expression in Ganzzelllysaten der Bauchspeicheldrüse (A) von Mäusen. (Vorhergesagte Bandengröße: 30 kD; beobachtete Bandengröße: 42 kD)
Immunhistochemische Analyse der CD40-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der CD40-Färbung in A431-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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