CD31 monoklonaler Kaninchen-Antikörper (C1959)

Sicherheitsdatenblatt

Hauptmerkmale und Details

Rekombinanter monoklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD31

Ziel: CD31
Quelle/Host: Kaninchen
Reaktivität: Mensch, Maus, Ratte
Klonalität: Monoklonal
Anwendungen: WB, IHC, IF/ICC, IP
Konjugation: Unkonjugiert
Lagerung: bei -20°C

Marke:

KAT.-NR. : AMA01571

US$ Bitte wählen

Größe:

50μL 100 μL

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Produktdetails

Hintergrund

Zelladhäsionsmolekül, das bei den meisten entzündlichen Erkrankungen für die transendotheliale Migration (TEM) von Leukozyten erforderlich ist. Tyr-690 spielt eine entscheidende Rolle in der TEM und ist für den effizienten Transport von PECAM1 zum und vom Lateral Border Recycling Compartment (LBRC) erforderlich. Außerdem ist es wichtig, damit die LBRC-Membran um wandernde Leukozyten herum gezielt werden kann. Transhomophile Wechselwirkungen können bei der Adhäsion von Endothelzellen über Zellverbindungen eine Rolle spielen. Die heterophile Interaktion mit CD177 spielt eine Rolle bei der transendothelialen Migration von Neutrophilen. Die homophile Ligation von PECAM1 verhindert die Makrophagen-vermittelte Phagozytose benachbarter lebensfähiger Leukozyten durch die Übertragung eines Ablösungssignals.

Bewerbung

Um eine optimale Testleistung sicherzustellen, empfiehlt AREX die Durchführung einer auf jedes Testsystem zugeschnittenen Reagenzientitration, um optimale Nachweisergebnisse zu erzielen.

WB	1:500 - 1:2000
IHC	1:100 - 1:300
IF/ICC	1:100 - 1:300
IP	1:50 - 1:100

*Ergebnisse sind probenspezifisch. Bitte beziehen Sie sich als Referenz auf Ihre lokalen Testbedingungen und Testparameter.

Übersicht

Beschreibung	Rekombinanter monoklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD31
Spezifität	Erkennt endogene Mengen an CD31-Protein
Antikörpertyp	Primärer Antikörper, rekombinant
Immunogen	Rekombinantes Fusionsprotein von menschlichem CD31. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt.
Reinigung	Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt.
Molekulargewicht	Voraussichtlich: 82 kD; Beobachtet: 130 kD
Form/Puffer	Flüssigkeit in PBS, pH 7,3, 50 % Glycerin, 0,05 % BSA und 0,05 % Proclin300.
Alternative Namen	Thrombozyten-Endothelzelladhäsionsmolekül; PECAM-1; EndoCAM; GPIIA; PECA1; CD31
Gensymbol	PECAM1
Entrez Gene	5175 (Mensch); 18613(Maus); 29583(Ratte)
SwissProt	P16284 (Mensch); Q08481(Maus); Q3SWT0(Ratte)

*AREX optimiert unsere Produkte kontinuierlich. Der Inhalt der Webseite spiegelt möglicherweise nicht die neuesten Aktualisierungen wider. Für Anfragen wenden Sie sich bitte an info@arexbio.com oder Ihren lokalen Händler.
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Daten

Western-Blot-Analyse der CD31-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), Mäusegehirn (B) und Rattenmilz (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 82 kD; beobachtete Bandengröße: 130 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD31-Färbung in menschlichen Tonsillen-Formalin-fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit TE-Puffer (pH 9,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD31-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.

Immunhistochemische Analyse der CD31-Färbung im formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt der Maushaut. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit TE-Puffer (pH 9,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde Tyramide-AREX® Fluor 488 (grün) verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit DAPI (blau) gegengefärbt.

Lagerung

Kurzfristig bei 4°C lagern. Bei längerer Lagerung bei -20 °C lagern und Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.

Hinweis

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren geeignet.

FAQs

Was sind die wichtigsten Arten von Forschungsantikörpern und wie unterscheiden sie sich?

Forschungsantikörper werden hauptsächlich in monoklonale Antikörper und polyklonale Antikörper unterteilt. Monoklonale Antikörper bieten in der Regel eine höhere Spezifität und eine bessere Chargenkonsistenz, während polyklonale Antikörper oft eine stärkere Affinität bieten, aber möglicherweise größere Unterschiede zwischen den Chargen aufweisen. Die Wahl hängt von Ihren spezifischen experimentellen Anforderungen ab.

Wie kann ich feststellen, ob ein Forschungsantikörper für mein Experiment geeignet ist?

Es wird empfohlen, das Produktdatenblatt sorgfältig auf validierte Anwendungen, Speziesreaktivität, empfohlene Verdünnungen und veröffentlichte Referenzen zu prüfen. Bei neuen Antikörpern ist in der Regel die Durchführung einer Validierung im kleinen Maßstab mit positiven Kontrollproben hilfreich.

Kann eine unsachgemäße Lagerung von Forschungsantikörpern die Versuchsergebnisse beeinflussen?

Ja. Antikörper reagieren empfindlich auf Temperatur, wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen und Kontamination. Eine unsachgemäße Lagerung kann zu verminderter Aktivität, erhöhtem Hintergrund oder schwächeren Signalen führen. Befolgen Sie am besten die Lagerungshinweise im Produktdatenblatt.

Warum funktioniert die im Datenblatt empfohlene Verdünnung in meinem Experiment nicht?

Die empfohlene Verdünnung richtet sich nach den Testbedingungen des Lieferanten. Faktoren wie Probentyp, Fixierungsmethode und Nachweissystem in Ihrem Labor können die optimale Arbeitskonzentration beeinflussen. Oft ist es notwendig, eine Verdünnungsreihenoptimierung im eigenen System durchzuführen.

Welche Vorsichtsmaßnahmen sollte ich treffen, wenn ich einen neu erworbenen Forschungsantikörper zum ersten Mal verwende?

Es empfiehlt sich, den Antikörper (insbesondere konzentrierte oder lyophilisierte) kurz zu zentrifugieren und anschließend einen kleinen Pilotversuch unter den empfohlenen Bedingungen durchzuführen. Auch die Aufzeichnung der Chargennummer und des Verwendungsdatums ist für die zukünftige Nachverfolgung hilfreich.

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