Polyklonaler Kaninchen-Antikörper CD254
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD254 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD254-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem CD254 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 27; Beobachtet: 40 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | OPGL; RANKL; TRANCE; Mitglied der Tumor-Nekrose-Faktor-Liganden-Superfamilie 11; Osteoklasten-Differenzierungsfaktor; ODF; Osteoprotegerin-Ligand; OPGL; Rezeptoraktivator des Kernfaktor-Kappa-B-Liganden; RANKL; TNF - bedingte Aktivierung - induziertes Zytokin; TRANCE; CD254 |
Gensymbol | TNFSF11 |
Entrez Gene | 8600 (Mensch) |
SwissProt | O14788 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CD254-Expression in Ganzzelllysaten von Jurkat (A) und Raji (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 27; 30; 35 kD; beobachtete Bandengröße: 40 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD254-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeabschnitten menschlicher Lymphknoten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD254-Färbung in Jurkat-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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