Polyklonaler Kaninchen-Antikörper CD222
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD222 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD222-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem CD222 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 274 kD; Beobachtet: 274 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | MPRI; Kationenunabhängiger Mannose-6-Phosphatrezeptor; CI Man-6-P-Rezeptor; CI-MPR; M6PR; 300 kDa Mannose-6-Phosphat-Rezeptor; MPR 300; Insulinähnlicher Wachstumsfaktor-2-Rezeptor; Insulinähnlicher Wachstumsfaktor-II-Rezeptor; IGF-II-Rezeptor; M6P/IGF2-Rezeptor; M6P/IGF2R; CD222 |
Gensymbol | IGF2R |
Entrez Gene | 3482 (Mensch); 16004(Maus) |
SwissProt | P11717 (Mensch); Q07113(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CD222-Expression in Ganzzelllysaten von Jurkay (A), K562 (B) und Caco2 (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 274 kD; beobachtete Bandengröße: 274 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD222-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD222-Färbung in Jurkay-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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