Polyklonaler Kaninchen-Antikörper CD120b
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD120b |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD120b-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem CD120b umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 48 kD; Beobachtet: 65 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | TNFBR; TNFR2; Mitglied der Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor-Superfamilie 1B; Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor 2; TNF-R2; Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor Typ II; TNF-RII; TNFR-II; S. 75; p80 TNF-alpha-Rezeptor; CD120b; Etanercept |
Gensymbol | TNFRSF1B |
Entrez Gene | 7133 (Mensch); 21938(Maus); 156767(Ratte) |
SwissProt | P20333 (Mensch); P25119(Maus); Q80WY6(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CD120b-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), A375 (B), DLD (C), Mäusehirn (D), Mäuseherz (E), Rattenhirn (F), Rattenherz (G). (Vorhergesagte Bandengröße: 48 kD; beobachtete Bandengröße: 65 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD120b-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Lungenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD120b-Färbung in PC12-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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