Polyklonaler Kaninchen-Antikörper CD11b
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD11b |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD11b-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Protein, das dem menschlichen CD11b entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 127 kD; Beobachtet: 170 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CD11B; CR3A; Integrin alpha-M; CD11-Antigen-ähnliches Familienmitglied B; CR-3 Alpha-Kette; Zelloberflächen-Glykoprotein MAC-1 Untereinheit Alpha; Leukozytenadhäsionsrezeptor MO1; Neutrophilen-Adhärenzrezeptor; CD11b |
Gensymbol | ITGAM |
Entrez Gene | 3684 (Mensch) |
SwissProt | P11215 (Mensch); P05555(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CD11b-Expression in Ganzzelllysaten von U937 (A), Mäusemilz (B) und Rattenlunge (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 127 kD; beobachtete Bandengröße: 170 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD11b-Färbung im formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt der Milz von Mäusen. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD11b-Färbung in THP1-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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