Calnexin (Phospho-S583) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Calnexin (Phospho-S583) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Calnexin-Protein nur, wenn es an S583 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S583 des menschlichen Calnexin-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 67 kD; Beobachtet: 90 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Calnexin; IP90; Haupthistokompatibilitätskomplex-Klasse-I-Antigen-Bindungsprotein p88; S. 90 |
Gensymbol | CANX |
Entrez Gene | 821 (Mensch); 12330(Maus); 29144(Ratte) |
SwissProt | P27824 (Mensch); P35564(Maus); P35565(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Calnexin (Phospho-S583)-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), SHSY5Y (B), A549 (C), Mausmilz (D), Mauslunge (E), Rattenmilz (F), Rattenlunge (G). (Vorhergesagte Bandengröße: 67 kD; beobachtete Bandengröße: 90 kD)

Immunhistochemische Analyse der Calnexin (Phospho-S583)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Calnexin (Phospho-S583)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
FAQs
Neue Produkte
Sicherheitsdatenblatt
