Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Aquaporin 2 (Phospho-S256).
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Aquaporin 2 (Phospho-S256) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Aquaporin-2-Protein nur, wenn es an S256 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S256 des menschlichen Aquaporin-2-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 28 kD; Beobachtet: 37; 28 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Aquaporin-2; AQP-2; ADH-Wasserkanal; Aquaporin-CD; AQP-CD; Kanalwasserkanalprotein sammeln; WM-CD; Wasserkanalprotein für den Nierensammelkanal |
Gensymbol | AQP2 |
Entrez Gene | 359 (Mensch); 11827(Maus); 25386(Ratte) |
SwissProt | P41181 (Mensch); P56402(Maus); P34080(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Aquaporin 2 (Phospho-S256)-Expression in Ganzzelllysaten von Mäusenieren (A), Rattennieren (B) und Mäuselungen (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 28 kD; beobachtete Bandengröße: 37; 28 kD)

Immunhistochemische Analyse der Aquaporin 2 (Phospho-S256)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Aquaporin 2 (Phospho-S256)-Färbung in HIOEC-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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