Polyklonaler Androgenrezeptor-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Androgenrezeptor |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Androgenrezeptorprotein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region des menschlichen Androgenrezeptors umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Vorhergesagt: 99; Beobachtet: 120 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | DHTR; NR3C4; Androgenrezeptor; Dihydrotestosteron-Rezeptor; Kernrezeptor-Unterfamilie 3, Gruppe C, Mitglied 4 |
Gensymbol | AR |
Entrez Gene | 367 (Mensch); 11835(Maus); 24208(Ratte) |
SwissProt | P10275 (Mensch); P19091(Maus); P15207(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Androgenrezeptor-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), LOVO (B), H1688 (C), Mäuseleber (D), Mäuseniere (E), Rattenleber (F) und Rattenherz (G). (Vorhergesagte Bandengröße: 99; 110 kD; beobachtete Bandengröße: 120 kD)

Immunhistochemische Analyse der Androgenrezeptorfärbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Prostatakrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Androgenrezeptorfärbung in HEK293T-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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