Polyklonaler Kaninchen-Antikörper AMY2B
Sicherheitsdatenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:10 - 1:50 |
FC | 1:10 - 1:50 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen AMY2B |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an AMY2B-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-terminalen Region von menschlichem AMY2B umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 57 kD; Beobachtet: 68 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Alpha-Amylase 2B; 1,4-alpha-D-Glucan Glucanohydrolase 2B; Karzinoid-Alpha-Amylase |
Gensymbol | AMY2B |
Entrez Gene | 280 (Mensch) |
SwissProt | P19961 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der AMY2B-Expression in HL60- (A), CEM- (B) und K562-Ganzzelllysaten (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 57 kD; beobachtete Bandengröße: 68 kD)
Immunhistochemische Analyse der AMY2B-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der Anti-AMY2B-Färbung in 293-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
Durchflusszytometrische Analyse von CEM-Zellen mit Anti-AMY2B-Antikörper. Die Zellen wurden mit 2 % Paraformaldehyd fixiert (10 Min.) und dann mit 90 % Methanol 10 Min. lang permeabilisiert. Die Zellen wurden in 2 % Rinderserumalbumin inkubiert, um unspezifische Protein-/Proteininteraktionen zu blockieren, gefolgt von der Zugabe des Antikörpers bei 37 °C für 60 Minuten. Der Sekundärantikörper Goat Anti-Rabbit IgG (H&L) - AREX® Fluor 488 wurde 40 Minuten bei 37 °C inkubiert. Unter den gleichen Bedingungen wurde ein Isotyp-Kontrollantikörper (blaue Linie) verwendet.
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