AMPK alpha 1 Kaninchen Polyklonaler Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen AMPK alpha 1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an AMPK-Alpha-1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem AMPK alpha 1 umfasst. Die genaue Sequenz ist geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 64 kD; Beobachtet: 63 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | AMPK1; 5'-AMP-katalytische Untereinheit der aktivierten Proteinkinase Alpha-1; AMPK-Untereinheit alpha-1; Acetyl-CoA-Carboxylase-Kinase; ACACA-Kinase; Hydroxymethylglutaryl-CoA-Reduktase-Kinase; HMGCR-Kinase; Tau-Proteinkinase PRKAA1 |
Gensymbol | PRKAA1 |
Entrez Gene | 5562 (Mensch); 105787(Maus); 65248(Ratte) |
SwissProt | Q13131 (Mensch); Q5EG47(Maus); P54645(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der AMPK-Alpha-1-Expression in Ganzzelllysaten von Hela (A), HEK293T (B) und Rattenmilz (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 64 kD; beobachtete Bandengröße: 63 kD)

Immunhistochemische Analyse der AMPK-Alpha-1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Lungenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der AMPK-Alpha-1-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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