Alpha-adducin Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Alpha-adducin |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Alpha-Adducin-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem Alpha-Adducin umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 80 kD; Beobachtet: 80; 120 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ADD1; ADDA; Alpha-Adducin; Erythrozyten-Adducin-Untereinheit Alpha; ADD2; ADDB; Beta-Adducin; Erythrozyten-Adducin-Untereinheit Beta |
Gensymbol | ADD1; HINZUFÜGEN2 |
Entrez Gene | 118; 119 (Mensch); 11518; 11519(Maus); 24170; 24171(Ratte) |
SwissProt | P35611; P35612 (Mensch); Q9QYC0; Q9QYB8(Maus); Q63028; Q05764(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Alpha-Adducin-Expression in HEK293T (A), C6 (B), CT26 (C) und K562 (D) Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 80 kD; beobachtete Bandengröße: 80; 120 kD)

Immunhistochemische Analyse der Alpha-Adducin-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Alpha-Adducin-Färbung in HEK293-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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