Alpha-2B Adrenerger Rezeptor Kaninchen Polyklonaler Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Alpha-2B Adrenergic Receptor |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen des Alpha-2B Adrenergic Receptor-Proteins. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region des menschlichen Alpha-2B-adrenergen Rezeptors umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 49 kD; Beobachtet: 62 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ADRA2L1; ADRA2RL1; Alpha-2B-adrenerger Rezeptor; Alpha-2-adrenerger Rezeptor-Subtyp C2; Alpha-2B-Adrenorezeptor; Alpha-2B-Adrenozeptor; Alpha-2BAR |
Gensymbol | ADRA2B |
Entrez Gene | 151 (Mensch); 24174(Ratte) |
SwissProt | P18089 (Mensch); P19328(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Expression des adrenergen Alpha-2B-Rezeptors in Hela (A)-Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 49 kD; beobachtete Bandengröße: 62 kD)

Immunhistochemische Analyse der Färbung des adrenergen Alpha-2B-Rezeptors in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Nierenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Färbung des adrenergen Alpha-2B-Rezeptors in HepG2-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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