AKAP13 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen AKAP13 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an AKAP13-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem AKAP13 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 307 kD; Beobachtet: 308 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | BRX; HT31; LBC; A-Kinase-Ankerprotein 13; AKAP-13; AKAP-Lbc; Brustkrebs-Kernrezeptor-bindendes Hilfsprotein; Guanin-Nukleotid-Austauschfaktor Lbc; Menschliche Schilddrüse - Ankerprotein 31; Onkogen der Lymphoid-Blast-Krise; LBC-Onkogen; Nicht-onkogener Rho-GTPase-spezifischer GTP-Austauschfaktor; Proteinkinase A-Ankerprotein 13; PRKA13; S. 47 |
Gensymbol | AKAP13 |
Entrez Gene | 11214 (Mensch) |
SwissProt | Q12802 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der AKAP13-Expression in HeLa (A)-Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 307 kD; beobachtete Bandengröße: 308 kD)

Immunhistochemische Analyse der AKAP13-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der AKAP13-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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