Polyklonaler Kaninchen-Antikörper ACOT8
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen ACOT8 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an ACOT8-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem ACOT8 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 35 kD; Beobachtet: 36 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ACTEIII; PTE1; PTE2; Acyl-Coenzym A Thioesterase 8; Acyl-CoA-Thioesterase 8; Choloyl-Coenzym A Thioesterase; HIV-Nef-assoziierte Acyl-CoA-Thioesterase; PTE-2; Peroxisomales Acyl-Coenzym A Thioesterhydrolase 1; PTE-1; Peroxisomale langkettige Acyl-CoA-Thioesterase 1; Thioesterase II; hACTE-III; hACTEIII; hTE |
Gensymbol | ACOT8 |
Entrez Gene | 10005 (Mensch); 170789(Maus) |
SwissProt | O14734 (Mensch); P58137(Maus); Q8VHK0(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der ACOT8-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), H446 (B) und Mauslunge (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 35 kD; beobachtete Bandengröße: 36 kD)

Immunhistochemische Analyse der ACOT8-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der ACOT8-Färbung in Raji-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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