Polyklonaler Kaninchen-Antikörper ACOT12
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen ACOT12 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an ACOT12-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem ACOT12 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 62 kD; Beobachtet: 62 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CACH; CACH1; STARD15; Acyl-Coenzym A Thioesterase 12; Acyl-CoA-Thioesterase 12; Acyl-CoA-Thioester-Hydrolase 12; Zytoplasmatische Acetyl-CoA-Hydrolase 1; CACH-1; hCACH-1; START-Domäne-enthält Protein 15; StARD15 |
Gensymbol | ACOT12 |
Entrez Gene | 134526 (Mensch); 74156(Maus); 170570(Ratte) |
SwissProt | Q8WYK0(Mensch); Q9DBK0(Maus); Q99NB7(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der ACOT12-Expression in Ganzzelllysaten von AML12 (A), Rattenleber (B), HepG2 (C) und HEK293T (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 62 kD; beobachtete Bandengröße: 62 kD)

Immunhistochemische Analyse der ACOT12-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Leberkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der ACOT12-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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