14-3-3 Theta/Tau (Phospho-S232) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen 14-3-3 Theta/Tau (Phospho-S232) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an 14-3-3 Theta/Tau-Protein nur, wenn es an S232 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das Resten um S232 des menschlichen 14-3-3 Theta/Tau-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 27 kD; Beobachtet: 28 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | 14-3-3 Protein-Theta; 14-3-3 Protein T-Zelle; 14-3-3 Protein Tau; Protein HS1 |
Gensymbol | YWHAQ |
Entrez Gene | 10971 (Mensch); 102634437; 22630(Maus); 25577(Ratte) |
SwissProt | P27348 (Mensch); P68254(Maus); P68255(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der 14-3-3 Theta/Tau (Phospho-S232)-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), Hela (B), A2780 (C), Mäusehirn (D), Mäuseleber (E), Rattenleber (F). (Vorhergesagte Bandengröße: 27 kD; beobachtete Bandengröße: 28 kD)

Immunhistochemische Analyse der 14-3-3 Theta/Tau (Phospho-S232)-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der 14-3-3 Theta/Tau (Phospho-S232)-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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